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Transcript

Variación Somaclonal

Integrantes: Herrea Abigail, Males Cristian, Neira Nicolay, Sanchez Daniel, Taipe Cristina, Tixi Edison.

Grupo: 3

Introducción

Variación fenotípica y génotipica entre plantas clones

Introducción

Procesos mutagénicos durante el establecimiento del explante

Pueden ser Espontáneo o Natural (Heredables o no)

Factores

  • Introducidos por variación genética o epigenética

Materiales y equipos

  • Medios de cultivo
  • Tiempo
  • Edad
  • Subcultivos.
  • Explante
  • Especie

Genotipo

Factores

Explanto

Explantes

Utilización

Selección de tejidos

Crecimiento de callo

Medios de cultivo

Temperatura

DETECCIÓN DE LA VARIACIÓN SOMACLONAL

Detección

DETECCIÓN DE LA VARIACIÓN SOMACLONAL

DETECCIÓN DE LA VARIACIÓN SOMACLONAL

DETECCIÓN DE LA VARIACIÓN SOMACLONAL

RAPDs

AFLP

EJEMPLO

PROTOCOLO

Etanol al 70% durante 60 segundos.

Lavar con agua destilada estéril.

Hipoclorito de sodio al 2,5% por 15 minutos y dos gotas de Tween 20.

Cinco lavados con agua destilada estéril.

Aplicación

Aplicación Variación Somaclonal

  • Stylosanthes guianensis es una leguminosa forrajera distribuida ampliamente en el centro y sur de América tropical. Ya fue introducida en Australia, Africa, Asia, y recientemente en los Estados Unidos
  • La eficiencia en el mejoramiento de una especie vegetal depende de la disponibilidad de la variación genética, de la selección, de la fijación genética, y de la rápida propagación de los materiales sobresalientes. Los métodos de cultivo de tejidos pueden integrarse a un programa de mejoramiento para aumentar la eficiencia de algunos de los procesos mencionados (Jaramillo, 1982).

Materiales y Metodos

Materiales y Metodos

  • semillas
  • 6 Generaciones (1 sola semilla) [Autopolinización]
  • Altamente Autogamas y uniformes
  • etanol 70% 5 min
  • NaHCl 5% 8 min
  • 3 enjuagues agua destilada esteril
  • tubos de ensayo
  • Medio MS sin hormonas
  • semillas en obscuridad 26 C - 7 dias

Explantes

Segmentos foliares de 4mm2 y segmentos de hipocolito de 5mm de largo

MS + Piridoxina (1mg/L) + acido nicotinico (1mg/L) + inositol (100mg/L) + tiamina (1mg/L) ANA (2mg/L) + BAP (8mg/L)

27 C . 2000 lux . fotoperido 16/8 h

callos - 12 dias de cultivo

Callos . MS + 2mg/L ANA + 8 mg/L BAP . Luz continua

Subcultivados 30 dias de intervalo

Organogenesis 4E ( MS + vitamina B5 + 2% sacarosa + 0,04 mg/L BAP + 0,02 mg/L ANA

callos subcultivados 30 - 60 dias

Originales y subcultivados = plantas

114 plantas

Conclusiones

-Tasa relativamente alta de tetraploidea

-Presentan ventajas (difieren fenotipicamente) de las diploideas, podemos decir que es valido explorar la inducción de tetraploidea 4X para el mejoramiento de la Stylosanthes guianensis.

-Las diferencias genotipicas de las tetraploideas y haploideas son estables

-El estudio concluye en que es posible generar varios fenotipos de Stylosanthes guianensis partiendo del tejido de un solo cultivo de esta leguminosa

-La generacion de un gran numero de plantas permitiria la obtencion de genotipos con variantes utiles que podrian utilizarse en un programa de mejoramiento.

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