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Guía de enfermería, toma de muestras de laboratorio...

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Nancy Ospina

on 13 January 2015

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Guía de enfermería, toma de muestras de laboratorio...
UCIN 2014

INTRODUCCIÓN
Información utilizada para establecer un diagnóstico, para seguimiento de una patología y/o pronóstico de una enfermedad, evaluar la efectividad de un tratamiento entre otros.
Una prueba analítica no es un mero “análisis de sangre”, sino un proceso complejo en el que participan diferentes profesionales
Cumplir requisitos en la etapa pre analítica del proceso

DEFINICIONES
MUESTRAS DE DIAGNÓSTICO
ESTABILIDAD DE LA MUESTRA
ÁREA DE OBTENCIÓN DE LA MUESTRAS
RECIPIENTE PRIMARIO
TRANSPORTE DE LA MUESTRA DE DIAGNÓSTICO
ESPECIMEN
ETAPA PREANALITICA EXTRA-LABORATORIO
FASE ANALÍTICA
MUESTRA
RECOMENDACIONES GENERALES PARA LA TOMA DE MUESTRAS
Cumplir con las Normas de bioseguridad
Cumplir con las normas de manejo de elementos corto punzantes
Protocolo de accidente de trabajo con riesgo biológico institucional

CRITERIOS DE ACEPTABILIDAD O RECHAZO DE MUESTRAS ANALITICAS POR EL LABORATORIO
Solicitud mal diligenciada
Muestra mal rotulada
Muestra incorrecta
Muestra insuficiente
Muestra coagulada
Relativos al transporte de la muestra
OBJETIVO GENERAL
Minimizar los riesgos en el proceso de atención y brindar seguridad en el diagnóstico, terapia, pronóstico y seguimiento del paciente.
OBJETIVOS ESPECIFICOS
ETAPAS DE LA FASE PREANALITICA
FORMATO DE SOLICITUD:
• Nombre completo y apellidos
• Edad, sexo
• Numero único de historia clínica
• Datos clínicos y diagnostico o sospecha diagnostica:
• Aseguradora
• Servicio
• Cama
• Pruebas o estudios solicitados
• Firma del médico que solicita el estudio

IDENTIFICACION DE LA MUESTRAS
• Nombre completo
• Número de historia clínica
• Código asignado en la orden médica ( LA)
• Cama donde se encuentra ubicado el paciente
• Localización ( UCIN)
• Tipo de muestra y sitio anatómico.



CONDICIONES GENERALES DE ALMACENAMIENTO Y TRANSPORTE
Las muestras para cultivo de bacterias no deben ser almacenadas por más de 24 horas
Según el volumen obtenido: menos de 1ml o 1cc deben ser transportados en los primeros 15 a 30 minutos
Las muestras para estudios de anaerobios no deben ser refrigeradas
Muestras de líquido cefalorraquídeo, oído interno y ojos no deben ser refrigeradas
Los frascos para recolección de líquidos debe tener tapa rosca
Estandarizar los procedimientos
Preservar la integridad, seguridad y registro de las muestras
Minimizar el dolor
ETAPAS DE LA FASE PREANALITICA
REGISTRO DE DATOS
TOMA DE MUESTRAS DE LABORATORIO CLÍNICO EN NEONATOS
EXTRACCIÓN DE SANGRE:

Venosa
Arterial
Capilar
A través de un cateter central
EXTRACCIÓN DE SANGRE VENOSA
Sitios de punción venosa:
Venas dorsales de la mano
Vena basílica, cefálica y mediana de la fosa ante cubital
Vena radial, cubital y mediana del antebrazo
Safena interna y externa en el tobillo
Venas dorsales del pie
EXTRACCIÓN DE SANGRE ARTERIAL
Sitio de punción arterial:
• Arteria radial
• Arteria humeral
• Arteria umbilical ( catéter umbilical )

MATERIAL Y/O EQUIPO NECESARIO
Aguja hipodérmica número 23 (azul) corta
Jeringa para gases
INDICACIONES
• Bioquímicos: Glucosa, colesterol, iones, entre otros
• Hemáticos: Para el recuento de Glóbulos rojos, blancos y la formula leucocitaria.
• Inmunológicos: para la búsqueda de anticuerpos
• Determinar la presencia de tóxicos y otras sustancias en la sangre.

TECNICA DE EXTRACCIÓN
INDICACIONES

• Vigilar y controlar el equilibrio ácido-base en la gasometría.
• Cuando las muestras venosas no son adecuados.

TECNICA DE EXTRACCIÓN DE SANGRE ARTERIAL
Test de ALLEN
Palpar latido de la arteria
Puncionar con aguja numero 23 corta
Ángulo entre 15º y 45º
Hemostasia
Rotular jeringa con Fio2 y Tº
Enviar inmediatamente al laboratorio en recipiente con hielo ( conservar a 4ºC durante el transporte )
EXTRACCIÓN A TRAVES DE CATETER CENTRAL
Localización
• Vena yugular interna
• Vena subclavia
• Vena femoral
• Vena o Arteria umbilical en neonatos

MATERIAL Y/O EQUIPO NECESARIO:

• Carro de procedimiento
• Gorro, gafas de protección, mascarilla
• Guantes estériles
• Jeringa de 10cc, 5cc y heparinizada
• Tubos de recolección
• Rótulos con código LA

CATETER UMBILICAL VENOSO O ARTERIAL
• Flujo de infusión se interrumpa completamente
• Guantes estériles si hay que desconectar el sistema.
• Realizar limpieza del puerto con una gasa estéril impregnada de alcohol al 70º
• Desconectar el sistema y conectar una jeringa de 10cc y extraer 3cc de sangre heparinizada antes de tomar la muestra para el análisis; guarde y proteja la muestra.
• Luego extraer la cantidad de sangre necesaria para los análisis
• Deposite la muestra en los tubos para el laboratorio respetando. La toma para gases se hace directamente en la jeringa heparinizada.
• Infundir nuevamente los 3cc de sangre heparinizada de manera lenta para evitar vaso espasmo o trombos.
• Permeabilizar nuevamente la vía del catéter con solución salina al 0.9% 1 a 2cc o infundir de 0.5cc a 1cc de la infusión de heparina ( 1UI/cc)

TECNICA DE EXTRACCION A TRAVES DE CATETER VENOSO CENTRAL
• Al extraer las muestras de sangre a través de un catéter de múltiples luces, utilizar la luz distal.
• Cerrar todas las infusiones antes de extraer las muestras de sangre y cerrar la llave de la vía del catéter.
• Colocar la jeringa de 10cc y extraer 3cc de sangre heparinizada guardarla y protegerla
• Colocar la jeringa de 5cc y extraer la cantidad de sangre necesaria para los análisis.
• Depositar la muestra en los tubos para el laboratorio
• Infundir nuevamente los 3cc de sangre heparinizada de manera lenta.
• Lavar el catéter con 2 a 3cc mL de suero fisiológico 0.9% o infusión de heparina ( 1UI/cc)
• Rotular las muestras
• Registro en la historia clínica

Sistema cerrado de extracción (Vamp) ejecutar los siguientes pasos:
• Cerrar la llave distal del sistema cerrado de extracción
• Aspirar con el émbolo del sistema Vamp hasta llenar con sangre el reservorio en su totalidad
• Cerrar llave proximal del sistema
• Limpiar la goma proximal con torundas de algodón impregnadas de alcohol al 70º
• Puncionar con la jeringa y extraer la cantidad de sangre necesaria para los estudios ordenados

Llenar los tubos de analítica
Abrir la llave proximal del sistema Cerrado
Introducir lentamente la sangre del reservorio
Abrir la llave distal del sistema Vamp para permitir el paso de la perfusión
Etiquetar los tubos

TOMA DE MUESTRA DE SANGRE CAPILAR
Sitios de punción capilar:
• Lateral externo o interno del talón

MATERIAL Y/O EQUIPO NECESARIO
1. Llevar el carro de procedimiento el cual contiene:
• Guantes desechables
• Equipo glucómetro con tiras reactivas
• Algodón limpio/ gasas estériles
• Lanceta de seguridad
• Guardián para la disposición del material corto punzante
• Alcohol 70º
2. Solución salina 0.9%
3. Papel de filtro para tamizaje metabólico

INDICACIONES
• Determinación rápida de los valores de la glicemia
• Determinación de las pruebas metabólicas (TSH neonatal )
• Para análisis de Extendido de Sangre Periférica
• Técnica actualmente utilizada en nuestro medio en los programas de seguimiento al neonato para tamizaje de valores de bilirrubinas y hematocrito. ( no disponible en la unidad neonatal)

TECNICA DE EXTRACCIÓN DE SANGRE CAPILAR
• Calentar la piel del neonato
• Sujetar el talón con los dedos pulgar e índice
• Realizar limpieza del área con una torunda de algodón impregnada de solución salina 0.9% o agua estéril
• Presionar el talón para favorecer la formación de la gota de sangre
• Rellenar la tira reactiva
• Para toma de muestra de TSH neonatal y Extendido de sangre periférica se debe solicitar al laboratorio clínico y ellos realizan el procedimiento
TOMA DE MUESTRAS PARA CULTIVO EN LA UCIN
MUESTRAS PARA CULTIVO:

• Hemocultivo
• Urocultivo
• Cultivo de líquido cefalorraquídeo
• Coprocultivo

HEMOCULTIVOS
INDICACIONES:

• Sospecha clínica de sepsis temprana; los tres primeros días de vida. ( tomar 1 hemocultivo) o tardía después de las primeras 72 horas de vida ( tomar 2 hemocultivos)
• RNT con RPM > 18 hr más un factor de riesgo asociado (corioamnionitis clínica, fiebre materna)
• RN prematuro (<37 semanas) con RPMO >18hr
• Cultivo de punta de catéter tomar 2 hemocultivos
• Microbiológicos: para la búsqueda de gérmenes en sangre
• Aislar el agente infeccioso en los estudios bacteriológicos

UROCULTIVO
INDICACIONES

• Se recomienda NO tomar urocultivo se rutina como parte del estudio de RN con sospecha de sepsis neonatal temprana ( guía de sepsis)
• Sepsis neonatal tardía

LIQUIDO CEFALORRAQUIDEO
INDICACIONES:

Sepsis neonatal tardía
Hemocultivo positivo
Estudio de VDRL
2ml
No refrigerar
Heparina
COPROCULTIVO
Invertir la cara del pañal
INDIACIONES:

EDA
HEMORRAGIA GASTROINTESTINAL
La muestra debe ser fresca, obtenida en recipiente estéril

EQUIPO:

Recipiente para muestra de materia fecal
Baja lenguas o pala del frasco
Gafas protectoras
Guantes y tapabocas
CONTRAINDICACIONES EN LA TOMA DE MUESTRAS DE LABORATORIO

• Defectos de coagulación
• Compromiso circulatorio en la extremidad
• Colaterales inadecuadas al practicar test de Allen
• Infección local o hematomas en el sitio de punción

COMPLICACIONES EN LA TOMA DE MUESTRAS DE LABORATORIO
• Sangrado excesivo por el punto de punción
• Formación de hematomas
• Infecciones por pérdida de integridad de la piel
• Punciones múltiples para localizar las venas
• Laceración de arteria
• Lesión nervio adyacente
• Trombosis o embolia en punción de grandes vasos
• Anemia iatrogénica
• Dolor
• Coagulación del catéter


GRACIAS
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