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FACTORES QUE INFLUYEN EN LA VELOCIDAD DE DESTRUCCIÓN

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BENITO GARAY JAGUEY

on 4 November 2015

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Transcript of FACTORES QUE INFLUYEN EN LA VELOCIDAD DE DESTRUCCIÓN

TEMPERATURA
FACTORES QUE
INFLUYEN EN LA
VELOCIDAD DE
DESTRUCCIÓN
DE LOS MICROORGANISMOS.
Las temperaturas elevadas tienen efectos dañinos sobre los microorganismos
Si se utiliza un agente antimicrobiano
el incremento de temperatura acelera
la destrucción de los microorganismos
Ejemplo:
La muerte de bacterias en suspensión
en presencia de fenol es más rápida a
42 ° que a 30°
TIPO DE MICROORGANISMOS
Los microorganismos difieren en susceptibilidad a los agentes físicos y químicos
ESTADO FISIOLÓGICO
DE LAS CELULAS
Las células jóvenes metabólicamente activas son más fácilmente destruídas que las células viejas.
Las células vegetativas son
más susceptibles que las
formas esporuladas.

Las propiedades físicas y químicas
del medio influyen en la eficacia de
la destrucción microbiana
AMBIENTE
Ejemplo:
El calor es más eficaz en
ácidos que en material
alcalino.
LIMPIEZA DE MATERIAL REUSABLE
NO CONTAMINADO
Limpieza
:
Proceso de remover por medios mecánicos
y /o físicos el polvo, grasa y otros contaminantes
de las superficies, equipos, materiales, personal
Los procesos de limpieza y desinfección son indispensables para controlar la presencia de
microorganismos en el ambiente.
El primer paso de la Desinfección
es la limpieza
La limpieza remueve restos de
tejidos, sangre, moco, que pueden
interferir con la acción del desinfectante
Para una limpieza adecuada hay que considerar:
- La acción del agente utilizado ( remoción mecánica, disolución o detergente.
- Condiciones requeridas
- El tiempo necesario para que ejerza su acción.
Los instrumentos deben desarmarse para
para asegurarse que todas las superficies
serán limpiadas.
La limpieza puede acompañarse
de lavado mecánico o manual.
El 99.8 % de la materia orgánica puede
removerse con una limpieza meticulosa.
Recipientes que debe haber
en el laboratorio:
* Cestos o bolsas autoclavables
para recibir cultivos y muestras.
* Vasijas de un solo uso, para desechar
portaobjetos, pipetas pasteur.
* Vasijas altas para pipetas graduadas.
Bolsas de plástico.
Todos estos recipientes deben ir a
la sección de limpieza y esterilización
para el tratamiento final y esterilización
de aquellos potencialmente contaminados
ELECCIÓN DEL RECIPIENTE
* Vasijas de desecho fuertes y esterilizables por autoclave
También son adecuados
los de polipropileno de 1 litro
Los recipientes de desecho de un litro
deben contener 750 ml de desinfectante
líquido, para evitar que se derrame al
ascender
Las vasijas para las pipetas recuperables deben estar hechas de polipropieno o de goma. Son de mayor seguridad que el vidrio
Las vasijas deben ser suficientemente altas para permitir que las pipetas se sumerjan totalmente sin que se derrame el desinfectante.
CARACTERÍSTICAS DEL AGENTE
DE LIMPIEZA SELECCIONADO
1. Ser capaz de remover tejido orgánico.
2. Capaz de prevenir depósitos flotantes.
3. Con baja formación de espuma.
4. Capaz de ser enjuagado completamente.
5. Compatible con los materiales que están siendo limpiados.
Los detergentes enzimáticos están específicamente diseñados para penetrar y desbaratar las proteínas y la materia orgánica.
DESINFECCIÓN:
Se emplea en los instrumentos de uso médico, utensilios, paredes y pisos de las habitaciones de los enfermos, etc.,
Con el propósito de evitar una posible infección.
Para realizar este proceso se usan agentes químicos (desinfectantes) o procesos físicos como el calor.
SANITARIZACIÓN:
se refiere al proceso empleado para reducir el contenido de microorganismos viables remanentes en una superficie limpia
En la industria se emplea este término cuando se tratan, con agentes químicos o físicos, las áreas de producción y los equipos empleados en la elaboración de productos, con el propósito de reducir el contenido microbiano
La limpieza y desinfección de equipos de laboratorio, refrigeradores, autoclaves, hornos, debe realizarse por lo menos una vez al mes.

TRATAMIENTO Y ELIMINACIÓN
DE MATERIALES CONTAMINADOS
Todo material sucio de laboratorio se considera de alto riesgo de transmitir infecciones
Existen tres métodos prácticos para el tratamiento de los materiales de laboratorio desechados y de los desechos contaminados:
• La esterilización por autoclave.
• La incineración ( no utilizada en los laboratorios )
• La desinfección química.
ELECCIÓN:
*Atendiendo a la naturaleza. (si es desechable o recuperable).
* Si se ve afectado por el calor.
* La incineración se aconseja si el incinerador esta bajo control
del personal de laboratorio.
Enjuague y secado
:
Después de la limpieza los instrumentos que se desinfectarán deberán ser enjuagados vigorosamente para remover cualquier residuo de detergente.
Hay que secar cuidadosamente cada instrumento usando aire para secar orificios y ranuras pequeñas para prevenir la dilución del desinfectante.

La desinfección sola es aconsejable únicamente para las pipetas graduadas recuperables.
Organización del área de desinfección y descontaminación :
área de limpieza y esterilización
debe contar con: autoclaves, trituradora, unidad de eliminación de basura, fregaderos hondos, máquinas para lavar material de vidrio, estufas de desecación, estufas de esterilización y mesas grandes de acero inoxidable.
El material contaminado llega en sus recipientes de color codificado a una zona designada y utilizada únicamente para este fin
Se separan de acuerdo con su color y se envían al incinerador o se cargan en el autoclave.
Antes de ser esterilizado al autoclave, deben quitarse las tapas desechables de manera que no dificulten la penetración del vapor quitarse las ligaduras de las bolsas de plástico y abrir por completo las bolsas en las cestas o cubos
MATERIALES DE VIDRIO CONTAMINADOS
Los medios de cultivo pueden verterse o extraerse y los tubos, frascos, etc., se lavan a mano o mecánicamente con un detergente adecuado.
El tipo de líquido o polvos de lavado que se utilice dependerá de la dureza del agua suministrada y del método de lavado.
El material de vidrio nuevo, excepto el fabricado de borosilicato o material similar, puede requerir neutralización. Cuando se esterilizan al autoclave líquidos en tubos o frascos de vidrio sódico puede liberarse álcali y alterar el pH. La inmersión durante varias horas en ácido clorhídrico al 2-3% es por lo general suficiente, aunque es conveniente comprobar una muestra llenándolos de agua destilada neutra más unas gotas de un indicador apropiado y esterilizándolos en el autoclave.
VASIJAS DE DESECHOS:
Después de dejarlas toda la noche para permitir que actúe el desinfectante, debe verterse cuidadosamente el contenido de las vasijas a través de un colador de polipropileno. El colador y su contenido se ponen en un cesto desechable y se esteriliza al autoclave.

Deben utilizarse guantes de goma para estas operaciones. Las vasijas de desecho vacías se esterilizan al autoclave antes de volver al laboratorio para su uso posterior. Pueden tener contaminación residual.

PIPETAS REUTILIZABLES:
Tras sumergirlas totalmente en desinfectante y detergente durante toda la noche, deben retirarse las pipetas con las manos enguantadas.

Antes de lavar las pipetas, deben retirarse los tapones de algodón hidrófilo. Esto se puede hacer insertando su punta en un tubo de goma fijado al grifo de agua corriente. Los tapones que presenten dificultades para retirarlos pueden quitarse con un ganchillo. Se fabrican diversas excelentes máquinas lavapipetas que se fundan en la presión del agua y/o en la acción de sifón, aunque el lavado final debe hacerse en agua destilada.

MÉTODOS DE DESINFECCIÓN Y ESTERILIZACIÓN
MÉTODOS FÍSICOS
-- Calor Húmedo (Ej. Autoclave).
-- Calor Seco (Ej. Horno).
-- Radiaciones (Ej. Ultravioletas).
-- Filtración (Ej. Filtros Millipore ®).

MÉTODOS QUÍMICOS
-- Antisépticos (Ej. Alcohol).
-- Desinfectantes / Esterilizantes (Ej. Cloro).

VENTAJAS Y DESVENTAJAS DE LOS MÉTODOS FÍSICOS
Calor Húmedo: Autoclave
El Autoclave es el aparato más comúnmente utilizado en los laboratorios para esterilizar cultivos y soluciones que no se desnaturalicen a temperaturas mayores a 100°C.
Una temperatura de 121 °C ( 15 Lbs de presión) con un tiempo de exposición de 15 minutos sirve para destruir microorganismos, incluso los formadores de esporas.
Ventajas del calor húmedo:

• Rápido calentamiento y penetración.
• Destrucción de bacterias y esporas en corto tiempo.
• No deja residuos tóxicos.
• Hay un bajo deterioro del material expuesto.
• Económico.
Desventajas del Calor Húmedo:
• No permite esterilizar soluciones que formen emulsiones con el agua.
• Es corrosivo sobre ciertos instrumentos metálicos.

Materiales que se pueden esterilizar con vapor:
- Material textil - Material de vidrio- Material de goma- Instrumental quirúrgico de acero inoxidable- Soluciones acuosas - Todo aquel material cuyo fabricante certifique pueda ser esterilizado por vapor.

Materiales que no se pueden esterilizar con vapor:
- Sustancias oleosas- Sustancias grasas- Polvos- Instrumental quirúrgico cromado o niquelado- Artículos eléctricos sin cobertura especial- Todo material que no tolera la exposición al calor y a la humedad.
ciclo esterilización en autoclaves:
1. Se abre la válvula de admisión de vapor a la camisa precalentando la cámara.
2. Al terminar de salir el aire de la camisa, se abre la válvula que comunica camisa y cámara permitiendo la entrada de vapor a la cámara.
3. Cuando el vapor ocupa totalmente la cámara y el termómetro marca la temperatura establecida empieza el ciclo de esterilización.
4. Al terminar el ciclo se expulsa el vapor de acuerdo a necesidades: lentamente si se trata de líquidos para evitar una descompresión rápida o rápidamente si se trata de otras cargas.
5. Una vez expulsado el vapor se abre la válvula que comunica la camisa con la atmósfera. Se produce presión negativa y se realiza el secado por medio de la succión de aire en la cámara.
En los autoclaves de desplazamiento por gravedad que son los primeros modelos fabricados, el tiempo de penetración es prolongado por una incompleta penetración de aire y por lo tanto los tiempos de esterilización también son mayores. En la actualidad aún cuando funcionan con el mismo principio, facilitan su operación y aumentan el nivel de seguridad por medio de la incorporación de controles automáticos, bomba de vacío y microprocesadores.

Calor Seco: Horno
Todos los microorganismos son susceptibles en distinto grado, a la acción del calor. El calor provoca en ellos coagulación y desnaturalización de sus proteínas.
La efectividad del calor como método de esterilización depende de :
-- Temperatura
-- Tiempo de exposición
La estufa de esterilización ( Horno ), es el artefacto utilizado en los laboratorios para esterilizar por calor seco. Se requiere mayor temperatura y tiempo de exposición que el autoclave. La temperatura varía entre 120° y 180°C, requiriéndose distintos tiempos de exposición. A 140°C se necesitan por lo menos 5 horas de exposición, mientras que a 160°C se requieren al menos 2 horas de exposición.

HORNO
Ventajas del Calor Seco:
• No es corrosivo para metales e instrumentos.
• Permite la esterilización de sustancias en polvo y no acuosas, y de sustancias viscosas no volátiles.

Desventajas del Calor Seco:
• Requiere mayor tiempo de esterilización, respecto al calor húmedo, debido a la baja penetración del calor.

Materiales que pueden esterilizarse por calor seco.
• Instrumental quirúrgico cromado- Materiales de vidrio, aluminio o porcelana- Aceites, parafina, sustancias grasas, vaselina- Polvos (talco).

Materiales que NO se pueden esterilizar por calor seco
- Material textil (algodón, sedas, lino, etc.)
- Gomas - Materiales sintéticos - Todo material que se altere a la temperatura trabajo.

Temperatura
La temperatura de esterilización por Calor Seco deberá estar entre 160 °C – 170 °C.

Tiempos
El tiempo de exposición del material se determina mediante la correspondiente validación del ciclo.

El material a esterilizar se deberá cargar con el esterilizador frío, teniendo en cuenta las siguientes recomendaciones:

Cada unidad deberá quedar separada de las vecinas Los materiales no deberán estar en contacto con las paredes, piso y techo del esterilizador. La carga del esterilizador será homogénea y no deberá superar el 80% de la capacidad total de la cámara

Etapas del ciclo de esterilización por calor seco :
1. Colocar el material dentro del Esterilizador
2. Encender el Esterilizador
3. Verificar que los instrumentos de control de ciclo, tiempo y temperatura se encuentren en la posición correcta
4. Esperar hasta que los instrumentos de medición registren la temperatura seleccionada para el ciclo
5. Cuando se alcance la temperatura seleccionada, se comenzará a descontar el tiempo de esterilización
6. Cumplido el tiempo de exposición se apagará el Esterilizador
7. La descarga del Esterilizador se efectuará una vez que el material se haya enfriado

Precauciones
Durante el ciclo de Esterilización no deberá abrirse la puerta del Esterilizador porque ello implicaría abortar el ciclo, debiendo en este caso recomenzarlo.
Otros agentes físicos:
- Radiaciones ionizantes (rayos Gamma)
- Luz ultravioleta
- Filtración (Filtros Millipore ®)
- Ultrasonido

MÉTODOS QUÍMICOS:
La efectividad de estos agentes depende de las condiciones bajo las que actúan:
• Concentración: varía con el tipo de agente y de microorganismo, pues una misma concentración del agente puede producir un efecto diferente en distintos microorganismos.
• Tiempo: Los microorganismos no son susceptibles a un agente en la misma forma, por lo que no todos los microorganismos mueren al mismo tiempo.
• pH: el pH determina el grado de disociación y la efectividad del agente químico, pues a menor disociación, mayor permeabilidad y mayor efectividad.
Listado de Desinfectantes (agrupados por su radical químico)

Compuestos Fenólicos:
• Fenoles
• Cresoles

Alcoholes:
• Etílico
• Isopropílico

Halógenos:
• Yodo
• Cloro
• Oxidantes:
• Peróxido de hidrógeno
• Permanganato de potasio
• Colorantes:
• Azul de metileno
• Giemsa
• Acridina

Metales Pesados:
• Bicloruro de mercurio
• Nitrato de plata

Vapores y Gases:
• Formaldehído (2 – 5 %)
• Ozono (O3)
• Oxido de etileno
• Glicol.
• Ácidos:
• Ácido acético (1%)
• Ácido bórico

RECOMENDACIONES GENERALES PARA EL USO DE LOS DESINFECTANTES
• No deben mezclarse en un mismo recipiente productos antisépticos o desinfectantes de distinta composición.
• No se debe modificar la concentración establecida para cada procedimiento.
• Nunca se deben tapar utilizando cubiertas de metal, algodón, gasa, corcho o papel. Usar la tapa original.
• Una vez que se vierte el contenido del desinfectante o antiséptico, no deben retornarse a su envase original.
• Nunca debe llenarse un envase semivacío a partir de otro.
• Las diluciones deben hacerse a la temperatura, y según el procedimiento indicado por el fabricante.
• Deben almacenarse en áreas secas, ventiladas y protegidas de la luz.
• Vigilar y controlar la fecha de vencimiento de los antisépticos y desinfectantes
Selección de un desinfectante :
• Tipo y cantidad aproximada de microbios.
• Tipo y cantidad de materia orgánica presente.
• Tiempo de contacto.
• Tipo de superficie a ser desinfectada.
• Descripción de la fecha de eficacia e instrucciones de su uso.
• Seguridad y aceptabilidad ambiental del producto.
• Buena actividad residual.
• Costos. No necesariamente lo mejor es lo más costoso.

TIPOS DE GERMICIDAS Y SUS MECANISMOS DE ACCIÓN
Metales:
Los más efectivos son el mercurio, plata ,cobre y zinc.
Actúan inactivando las proteínas celulares al combinarse con ellas.
Entre los compuestos de mercurio que se emplean como antisépticos en heridas superficiales de la piel y mucosas están: el mercurocromo (mercromina) y el mertiolato.
Entre los compuestos de plata utilizados como antisépticos está el nitrato de plata (AgNO3) .
Entre los compuestos de cobre se encuentra el sulfato de cobre (CuSO4) que se utiliza como algicida en los recipientes abiertos que contienen agua.
Los compuestos de zinc también son fungicidas por lo que se utilizan para tratar el pie de atleta.
Acidos y álcalis: Actúan alterando la permeabilidad y coagulando las proteínas. En general los ácidos son más eficaces que los álcalis.
Dentro de estos compuestos se encuentran el sulfúrico (H2SO4), nítrico (HNO3), hidróxido sódico (NaOH) e hidróxido potásico (KOH).
COMPUESTOS INORGÁNICOS OXIDANTE:
actúan oxidando los componentes de la membrana y enzimas.
El agua oxigenada (H2O2) al 6% (20 volúmenes) se utiliza como antiséptico en pequeñas heridas de la piel
HALÓGENOS:
Los halógenos son agentes fuertemente oxidantes por lo que son altamente reactivos y destructivos para los componentes vitales de las células microbianas. Especialmente el cloro y el iodo son componentes de muchos antimicrobianos.
El iodo es un antiséptico y el cloro un desinfectante.
Cloro:

La muerte de los microorganismos por acción del cloro se debe en parte a la combinación directa del cloro con las proteínas de las membranas celulares y los enzimas. El cloro es un desinfectantes que actúan sobre proteínas y ácidos nucleicos de los microorganismos. El producto clorado más utilizado en desinfección es el Hipoclorito de sodio ( NaOCl ), que es activo sobre todas las bacterias, incluyendo esporas.
El hipoclorito de sodio al 1% se puede utilizar como desinfectante doméstico y hospitalario, y de hecho es el más barato, pero también el más efectivo. La única desventaja reconocida es su relativa toxicidad provocando reacciones alérgicas en algunas personas.
Concentración del cloro puro casero : 5.25 %
Concentración útil : 1 al 2 %
El Cloro es un biocida de amplio espectro barato y eficaz, que se utiliza en disoluciones de 500- 5000 ppm para desinfección medioambiental.
Sin embargo, una vez disuelto, los átomos de cloro tienen una vida media muy corta y para que el formulado tenga efecto, debe ser preparado in situ antes de su utilización.
NOTA: Si la solución comercial de Hipoclorito de Sodio es al 5.25%, la solución al 1% se prepara mezclando 1 litro de solución comercial y 4.25 litros de agua.
También se puede utilizar el siguiente método:
Ejemplo: Tenemos Cloro comercial al 5% y deseamos preparar un litro al 0.5% (5000 ppm).
FORMULA :

CD x VD
V = --------------
CC


VD : Volumen deseado.
CD : Concentración deseada.
CC : Concentración conocida.

0.5% x 1000 c.c.
V = -------------------- = 100 c.c
5%

Por tanto, se debe agregar 100 c.c. de hipoclorito de sodio al 5% a 900 c.c. de agua para tener 1000 c.c. de una dilución al 0.5%.

Compuestos de amonio cuaternarios :
Son agentes desinfectantes por su acción detergente, rompen la membrana citoplasmática debido a que disuelven las capas lipídicas, además desnaturalizan las proteínas. Son detergentes catiónicos eficaces contra bacterias vegetativas y algunos hongos, aunque no contra las mycobacterias ni esporas. Son inactivados por las proteínas y por una diversidad de materiales naturales y plásticos, por los detergentes no iónicos y por el jabón. Su utilización en el laboratorio es por tanto limitada, aunque tienen la clara ventaja de ser estables y de no corroer los metales. Se emplean generalmente a diluciones de 1-2% para la limpieza de superficie e instrumentos.
Los compuestos de amonio cuaternario no son tóxicos y son inofensivos para la piel y los ojos.
Ej. Cetrimida, Cloruro de benzalconio, etc.

Iodo:
El mecanismo mediante el cual el iodo ejerce su acción antimicrobiana es debido a su acción oxidante. El iodo se puede utilizar como antiséptico bajo dos formas:
tintura de iodo, es una solución alcohólica (tintura) de iodo (I2) más ioduro potásico (KI) o ioduro sódico (NaI).
iodóforos, son mezclas de iodo (I2) con compuestos que actúan como agentes transportadores y solubilizadores del iodo.
Por ejemplo, la povidona iodada (Betadine) es un complejo de iodo y polivinil pirrolidona (PVP).
Los agentes alquilantes actúan añadiendo pequeñas cadenas de átomos de carbono a las enzimas, que como consecuencia quedan inactivadas, lo que ocasiona la muerte de las células. El formaldehído, la formalina y el glutaraldehído son algunos de estos compuestos.
El óxido de etileno es un compuesto gaseoso que se utiliza como agente esterilizante para el tratamiento de material termosensible y objetos voluminosos que no pueden ser esterilizados mediante otros sistemas. Sin embargo, es un compuesto muy tóxico para la especie humana y su uso ya ha sido reemplazado por otros más seguros.
Orgánicos :
Alcoholes:
Los alcoholes actúan desnaturalizando las proteínas, disolviendo las capas lipídicas y como agentes deshidratantes. Se recomienda la utilización del Alcohol Etílico, no desnaturalizado, o Alcohol Isopropílico al 70%. La acción deshidratadora de ambos alcoholes al 95% limita su utilidad, ya que las proteínas deshidratadas resisten la desnaturalización. El etanol al 70% se usa como antiséptico de la piel y como desinfectante en los termómetros clínicos orales y algunos instrumentos quirúrgicos. El etanol y el isopropanol son utilizados como desinfectantes y antisépticos clínicos. Tomar en cuenta que el alcohol etílico al 70% tiene un efecto bacteriostático y que al 95% su efecto es bactericida.
Su actividad cae bruscamente en concentraciones menores al 50%. Las bacterias sometidas a la acción de alcohol concentrado sufren destrucción de la pared celular, permitiendo el paso de contenido intracelular y componentes de la pared celular al medio externo (endotoxinas). Las bacterias sometidas a la acción de alcohol al 70% sufren una deshidratación menos violenta, conservando la integridad celular. El alcohol se considera un desinfectante de nivel intermedio y se usa en la desinfección de superficies y artículos no críticos
El alcohol tiene la ventaja de no ser corrosivo. El alcohol Isopropílico es hasta cierto grado más germicida que el Etílico, pero es altamente deshidratante.
Las desventajas de los alcoholes en los equipos son que dañan la cubierta de los lentes, tienden a alterar y endurecer el material de goma y plástico, se inactivan en presencia de materia orgánica y se evaporan rápidamente. Esto condiciona que no se deben usar alcoholes como método de desinfección de alto nivel ni para materiales en inmersión.
b) Fenol y compuestos fenólicos:
Una solución acuosa al 5% de fenol mata rápidamente a las células vegetativas de los microorganismos. Sin embargo, las esporas son mucho más resistentes al fenol. Debido a que el fenol es tóxico y tiene un olor desagradable ya casi no se usa como desinfectante o antiséptico, siendo reemplazado por compuestos fenólicos que son sustancias derivadas del fenol menos tóxicas y más activas frente a los microorganismos. Lysol es una mezcla de compuestos fenólicos que se utiliza para desinfectar objetos inanimados como los suelos, paredes y superficies. El fenol y compuestos fenólicos actúan alterando la permeabilidad de la membrana citoplásmica así como desnaturalizando proteínas. El hexaclorofeno es un compuesto fenólico que ha sido reemplazado por la clorhexidina, menos tóxica para la especie humana.
RECOMENDACIONES GENERALES
a) No deben mezclarse en un mismo recipiente productos antisépticos o desinfectantes de distinta composición.
b) No se debe modificar la concentración establecida para cada procedimiento.
c) Nunca se deben tapar utilizando cubiertas de metal, algodón, gasa, corcho o papel. Usar la tapa original.
d) Una vez que se vierte el contenido del desinfectante o antiséptico, no deben retornarse a su envase original.
e) Nunca debe llenarse un envase semivacío a partir de otro.
f) Las diluciones deben hacerse a la temperatura, y según el procedimiento indicado por el fabricante.
g) Deben almacenarse en áreas secas, ventiladas y protegidas de la luz.
h) Vigilar y controlar la fecha de vencimiento de los antisépticos y desinfectantes
PROCEDIMIENTO DE DESINFECCIÓN DE ALTO NIVEL
1.- El material que será sometido a desinfección de debe estar totalmente libre de materia orgánica.
2. - Los agentes químicos utilizados deben ser los aprobados por el sector Salud
3.- La solución debe estar vigente.
4.- El personal debe manipular las soluciones con la protección adecuada
5.- El tiempo de desinfección será de acuerdo a las características del desinfectante.
6.- Los materiales a desinfectar se deben sumergir completamente en los agentes químicos.
7.- Los contenedores deben estar tapados para evitar vapores tóxicos en el ambiente.
8. - Pasado el tiempo de exposición se deben sacar los artículos manipulándolos con técnica aséptica (guantes estériles) y enjuagarlos con agua estéril o destilada cuidando de no contaminarlos.
deben secarse por medio de aire filtrado o compresas estériles y guardarse envueltos en paños estériles siguiendo las mismas recomendaciones que para el almacenamiento de material estéril. Bajo ninguna circunstancia los artículos pueden almacenarse húmedos.
9.- Utilizar controles químicos que midan la concentración del desinfectante
10.- La desinfección de alto nivel debe realizarse en áreas bien ventiladas, evitando la exponerse a los vapores producidos
11.- No enjuagar los materiales desinfectados con agua corriente. Si no se cuenta con agua destilada, debe usarse alcohol etílico o isopropílico para el último enjuague.
CONTROLES DE
ESTERILIZACION
Controles físicos
controlar el funcionamiento mecánico mediante termoelementos, manómetros, higrómetros, termómetros de que están dotados la mayoría de los distintos sistemas de esterilización
Controles químicos
Llamados termocromos e indicadores colorimétricos, se trata de compuestos principalmente a base de sales de diferentes metales
Controles biológicos
confirman si el proceso es capaz de alcanzar la pequeñísima probabilidad de supervivencia microbiana (10-6), considerada en toda la legislación internacional como garantía de esterilidad.
TIPOS DE CONTROLES BIOLÓGICOS
CON ESPORAS BACTERIANAS
a) Tiras de papel impregnadas de esporas en envases individuales
b) Ampollas con tiras o discos de papel inoculados de esporas y provistas de un medio de cultivo incorporado.
c) Suspensiones de esporas dosificadas para inocular los productos a esterilizar.
d) Suspensiones de esporas en el propio caldo de cultivo
LAS ESPORAS UTILIZADAS PROVIENEN DE:

a) Bacillus subtilis, COMO CONTROL BIOLÓGICO DE LA ESTERILIZACIÓN POR CALOR SECO Y ÓXIDO DE ETILENO.

b) Bacillus stearothermophilus PARA LA ESTERILIZACIÓN POR VAPOR DE AGUA.
ROTULADO DE MATERIAL
Puede ser:
Mecánico o Manual
El rotulado mecánico se hace con máquina o plantillas.
El rotulado manual se hace con etiquetas autoadhesivas o etiquetas previamente impresas.
DATOS:
a) Nombre del material
b) Destino
c) Fecha de elaboración
d) Validez del producto
e) Código del responsable
f) Número de lote
ALMACENADO:
El material esterilizado se debe colocar en contenedores de plástico, identificados externamente, que se puedan apilar para el ahorro de espacio.
Los contenedores se colocarán dentro de armarios cerrados, higiénicos, frescos y secos.
VIGENCIA DE LA ESTERILIZACIÓN

PRINCIPIOS DE BIOSEGURIDAD
UNIVERSALIDAD
Las medidas deben involucrar a todo el personal, el cual debe seguir las precauciones estándares rutinariamente para prevenir la exposición de la piel y de las membranas mucosas, en todas las situaciones que puedan dar origen a accidentes, estando o no previsto el contacto con sangre o cualquier otro fluido corporal de los paciente.
USO DE BARRERAS
evitar la exposición directa a sangre y otros fluidos orgánicos potencialmente contaminantes, mediante la utilización de materiales adecuados que se interpongan al contacto de los mismos. La utilización de barreras (ej. guantes) no evitan los accidentes de exposición a estos fluidos, pero disminuyen las consecuencias de dicho accidente.
MEDIOS DE ELIMINACIÓN DE
MATERIAL CONTAMINADO:
Comprende el conjunto de dispositivos y procedimientos adecuados a través de los cuales los materiales utilizados en la atención de pacientes, son depositados y eliminados sin riesgo.
EQUIPO
PROTECTOR PERSONAL

BATA DE MANGA LARGA
GORRO DESECHABLE O REUSABLE
MASCARILLA PARA PROTEGER BOCA Y NARIZ DEL CONTACTO CON GOTAS O AEROSOLES.
LENTES PROTECTORES CON CUBIERTA LATERAL
GUANTES DE TRABAJO RUDO CON MANGA LARGA,
HIPOALERGENICOS, SIN LATEX O TALCO PARA DISMINUIR LA POSIBILIDAD DE SENSIBILIZACIÓN
ZAPATOS ADECUADOS PARA DISMINUIR
POSIBLES RESBALONES O CAÍDAS
ES OBLIGACION DE LA INSTITUCIÓN PROVEER EQUIPO DE PROTECCIÓN ADECUADO (EPA) A LOS TRABAJADORES QUE ESTAN EN CONTACTO CON MATERIALES QUÍMICOS O CONTAMINADOS
ES RESPONSABILIDAD DEL PERSONAL, USAR LOS ARTÍCULOS
DE PROTECCION PERSONAL PARA EL TRABAJO

CAUSAS DE
ACCIDENTES BIOLÓGICOS

Inoculación accidental
ingesta accidental
derrames y salpicaduras
derrames en la recepción de muestras
salpicaduras en cara y ojos
salpicaduras y contacto directo
salpicaduras en la superficie de trabajo
aerosoles
por el aire
deliberados
de origen desconocido
POR LA NATURALEZA DEL ESPÉCIMEN BIOLÓGICO
CONTENCIÓN
El propósito de la contención es reducir al mínimo la exposición del personal de los laboratorios, otras personas y el entorno, con agentes potencialmente peligrosos.
SE EMPLEA PARA describir los métodos que hacen seguro el manejo de materiales infecciosos en el laboratorio
AGENTES MICROBIANOS QUE PRODUCEN
LAS INFECCIONES MAS FRECUENTES:

Virus de la inmunodeficiencia humana (VIH):
el riesgo de infectarse por este virus en un accidente laboral a través de una aguja que tiene sangre contaminada es estimado en 0.3-0.4%. En un contacto mucoso con sangre contaminada baja a un 0.05%.

Virus de la Hepatitis B (HBV):
el riesgo de infectarse por este virus en un accidente laboral a través de una aguja que tiene sangre contaminada es promedio un 15%, llegando hasta un 40%.

Virus de la Hepatitis C (HCV):
el riesgo en este caso no está todavía bien precisado citándose cifras de hasta un 10%
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