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GUÍA MANEJO Y CUIDADOS CVC HICKMAN

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by

ONCO HOSPITAL GENERAL ELCHE

on 17 December 2014

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Transcript of GUÍA MANEJO Y CUIDADOS CVC HICKMAN

LAVADO Y
HEPARINIZACIÓN DE UN CATÉTER DE HICKMAN.

Objetivos:
Autocuidados del catéter de Hickman
Para ello
necesita preparar
:
Una toalla limpia.
Un paquete de gasas estériles.
Solución antiséptica (Clorhexidina alcoholica.
No utilizar betadine para no enmascarar rojeces y posibles infecciones del catéter
).
2 jeringas de 5 mL y 2 jeringas de 10 mL.
3 ampollas de suero fisiológico de 10 mL.
1 vial de Heparina sódica al 5%.
2 válvulas de sellado en caso de que sea necesario cambiarlos.
Apósito autoadhesivo, o gasas estériles y esparadrapo




Para heparinizar el catéter:
1. Lávese las manos con jabón.
2. Extienda un paño o toalla limpia sobre una mesa.
3. Vierta el material sobre dicha toalla, empapando las gasas con el antiséptico.
4. Si se trata de un catéter fino, cargue dos jeringas de 5 mL (una para cada vía) con 0,5 mL de heparina sódica y 4,5 ml de suero fisiológico. Conéctele una aguja pequeña.
Si es un catéter grueso, cargue dos jeringas de 5 mL (una para cada vía) con 1 mL de heparina sódica y 4 mL de suero fisiológico. Conéctele una aguja pequeña.
5. Cargue dos jeringas de 10 mL con suero fisiológico, (tanto si se trata del catéter fino como del grueso).
6. Pincele la válvula de sellado tres veces y en la misma dirección con el antiséptico y deje secar durante dos minutos.
7. Con la pinza cerrada, conecte a la válvula la jeringa de suero fisiológico (rotando la jeringa hacia su derecha), abra la pinza e introduzca unos 9 mL, cerrando la pinza antes de terminar de introducir todo el suero.
8. Pincele de nuevo la válvula con antiséptico y deje secar durante dos minutos.
9. Con la pinza cerrada, conecte a la válvula la jeringa de la heparina, rotando la jeringa hacia su derecha, abra la pinza e introduzca unos 3,5 mL (si es un catéter fino), y unos 4,5 mL (si es un catéter grueso).
10. Pincele nuevamente la boca de la válvula al acabar con antiséptico.
11. La heparinización se hará por igual para ambas vías del catéter cada cuatro días.
12. La válvula de sellado se cambiará un día a la semana (y siempre que sea necesario).
13. Para realizar el cambio de la válvula se frotará con una gasa empapada en solución antiséptica la unión entre el catéter y la válvula (que va a rosca) siempre manteniendo las pinzas cerradas.

Gluconato de Clorhexidina (CHG)
Efectivo contra: Gram+, Gram-, hongos y levaduras
Mejor antiséptico para la preparación de piel (mejor que iodopovidona, alcohol y otros)
No es afectado por presencia de materia orgánica
Se absorbe sobre la piel y se libera por tiempo prolongado
Efecto residual
Rompe la membrana celular, precipitando las proteínas: con bajo nivel de resistencia potencial

Desobstrucción CVC
MANEJO Y CUIDADOS CVC HICKMAN
Catéter subcutáneo de
silicona radiopaca, de 1, 2 o 3 luces conectados a un tapón luer lock
Objetivo:
Cubrir las necesidades presentes y futuras de perfusión-extracción con los menores riesgos, procurando mantener el grado de bienestar y confort del paciente.
Está especialmente indicado para el uso de los siguientes
pacientes oncohematológicos
(por la cantidad de perfusiones y de extracciones venosas que precisan), pacientes dependientes de NTP, pacientes crónicos dependientes de antibioterapia o medicaciones antirreumáticas.
Su extremo se aloja en una vena gruesa del tórax o abdomen (yugular, subclavia, axilar, situándose su extremo distal en cava superior o cava inferior dependiendo de si la implantación es torácica, abdominal o inguinal). Una parte del catéter se sitúa subcutáneamente entre la vena canalizada y la salida a la piel.
Migración desde la piel.
Colonización, en la punta y el catéter.
Contaminación de líquidos de infusión.
Material del catéter.
Tiempo de permanencia.
Fallos en la aplicación de la técnica.
Manos del personal.

Causas de infección:
Infección del sitio de inserción.

BRC : Bacteremia Relacionada a Catéter

IRC : Infección Relacionada a Catéter

SC : Sépsis por Catéter

Bacteremia Relacionada con el Líquido de
infusión.

Complicaciones infeccionas:
Prevención infecciones CVC:
Factores Clínicos,
Económicos y de
Calidad de Atención en Salud.
A diario
deberá realizar la cura de la salida del catéter.
Para ello limpiará con suero fisiológico, secando con gasa estéril y después pincelar con gasa estéril impregnada en clorhexidina. Una vez seca se podrá colocar un apósito.

Deberá acudir al hospital si presenta alguna complicació
n como son:
La salida del catéter le supura, le duele o la tiene enrojecida.
Cordón rojo a lo largo del recorrido del túnel de catéter.
Tiene fiebre.
Si el dacrón asoma por la piel.
Si se rompe el catéter: se pondrá una pinza por encima de la rotura, bien la misma del catéter o la tradicional pinza de la ropa (si no se dispone de otra cosa), protegiendo el catéter con una gasa.

Material:
Guantes estériles.
Paño de campo estéril.
Gasas estériles.
Digluconato de Clorexidina 2%
2 jeringas de 5 cc.
2 jeringas de 10 cc.
2 ampollas de 10 cc de suero fisiológico.
2 jeringas de 5 cc. de solución de heparina sódica.
2 válvulas de sellado
Apósito estéril.


Procedimiento:
Lávese las manos con jabón o antiséptico y realice secado correcto de las mismas.
Prepare el material necesario.
Explique al paciente el procedimiento a realizar, anímelo a expresar sus dudas.
Extienda el paño estéril sobre el que se colocará el material.
Colóquese los guantes estériles.
Clampe la vía del catéter.
Retire la válvula de sellado.
Aplique clorexidina en la boca de la conexión del catéter.
Coloque una jeringa de 5 cc. en la conexión, desclampe la vía y
extraiga 5 cc de la solución de heparina del catéter.
Clampe de nuevo, desconecte la jeringa y conecte una de 10 cc. cargada con suero fisiológico.
Desclampe e introduzca 9 cc para el lavado de la vía.
Vuelva a clampar, retire la jeringa y conecte una de
5 cc. cargada con la solución de heparina, introduzca la cantidad adecuada según el grosor del catéter de Hickman.
Clampe y aplique clorexidina en la boca de la conexión.
Coloque una válvula de sellado nueva y cambie el apósito.
Se procederá de la misma forma para el lavado y heparinización de la otra vía.
Anote en el registro de enfermería el procedimiento.

Criterios de evaluación:
1. El paciente conoce necesidad del procedimiento.
2. Se ha preparado la solución según el grosor del catéter.
3. Se ha administrado la cantidad de solución según el grosor del catéter.
4. Se ha mantenido clampado el sistema durante las desconexiones de la jeringa.
5. El procedimiento queda anotado en la hoja de registro de enfermería.

Lavarse las manos con agua y jabón y secarlas con una toalla limpia
Retirar el apósito
En la ducha, con gasas estériles impregnadas en jabón, limpiar la piel alrededor de la zona de salida del catéter, haciendo círculos de dentro hacia fuera. Limpiar también la superficie externa del catéter.
Realizar la limpieza del catéter siempre en primer lugar y tire luego la gasa utilizada.
Aclarar con el agua de la ducha.
Secar con una toalla limpia
Aplicar suero fisiológico a chorro y secar después con gasa estéril.
Aplicar el antiséptico (clorhexidina alcohólica) de la misma manera y esperar que se seque.
Colocar el apósito estéril, evitando la zona de adhesión del anterior apósito para que no se irrite la piel.
No mantener el catéter pinzado
La parte externa del catéter la puede sujetar por medio de una cinta o cadena al cuello, para evitar que un tirón retire el catéter.
Los tapones que se emplean serán los tapones de seguridad antirreflujo.
CVC HICKMAN
Unidad de Oncología. HGU Elche.
1. Solicitar una Rx de tórax. Comprobar que el catéter está en la posición adecuada y que no existen acodaduras ni pliegues. Si existe alguno de estos problemas informar al médico para pedir consulta urgente a Radiología vascular.
2. Si el catéter está en posición correcta y no existen acodaduras:

2.1. Para acceder a las luces del catéter, proceda según procedimientos de heparinización y cuidados del catéter.
2.2. Poner
Urokinasa 10000 unidades diluídas en 2 mL en bolo,
en la vía del catéter que esté obstruída.
2.3. Clampar el catéter y
dejar actuar
a la Urokinasa durante
15 minutos
.
2.4. Aspirar suavemente.
2.5. Si el catéter no se desobstruye,
repetir
la Urokinasa I.V. en bolo,
hasta dos veces más (tres dosis máximo en 48 horas).

3.
Si
el catéter
continúa sin funcionar
después de tres dosis de Urokinasa en bolo, o se desobstruye, pero
vuelve a obstruirse
en las siguientes 48 horas:

3.1. Solicitar
estudio radiológico
con contraste (pedirlo urgente). Si el problema detectado es un trombo, actuar como sigue:
3.2. Solicitar
niveles de fibrinógeno
(deben ser > 125 mg/dL)

3.3. Pacientes > 20Kg: infundir
Urokinasa 120.000 unidades en 100 ml de glucosado 5% durante 1 hora
, después
Urokinasa 120000 unidades en 100 mL de G5% a pasar en 2 horas
(total Urokinasa 240000 unidades en 3 horas). Si las dos vías están obstruídas, dividir las dosis de Urokinasa por dos y pasar la mitad de cada dosis por cada una de las vías.

3.4. Pacientes < 20Kg: infundir 1200 U/Kg de Urokinasa por cada vía obstruída durante la primera hora, después 600 U/Kg/vía en las siguientes dos horas (total: 1800 U/Kg/vía). Infusión en 50 mL de glucosado 5%.

3.5. Si falla esta pauta se puede
repetir como máximo una vez más en 48 horas
.

Obtención muestras de sangre:
Extienda paño de campo sobre el tórax del paciente.
Cargue dos jeringas con 10 cc de suero fisiológico cada una y colóquelas en una esquina del paño de campo.
Si fuese necesario heparinizar, prepare jeringa con suero heparinizado, rotúrela, y colóquela en una esquina del paño de campo.
Eche sobre el paño de campo: Un paquete de gasas., jeringa de 5-10-20 ml según número de determinaciones, aguja de 0.8 x 25., Válvula de sellado (en caso de tener que heparinizar posteriormente la luz del catéter), Un par de guantes estériles.
Eche clorexidina 2% sobre el paquete de gasas.
Clampe todas las luces del catéter y pare todas la bombas de infusión si las hubiera.
Colóquese los guantes estériles.
Si se está infundiendo
sueroterapia, desconecte el sistema de infusión
de la luz del catéter de la cual se va a realizar la extracción sanguínea en el caso de que las luces estén heparinizadas,
retirar previamente la heparina
de dicha luz.
Limpie la válvula de sellado con clorexidina 2%..
Conecte al catéter una de las jeringas cargadas con 10 cc de suero fisiológico.
Desclampe el catéter.
Realice
lavado infundiendo rápidamente 9 cc de suero fisiológico
. Con el fin de evitar errores en los resultados y hemodilución). Espere unos segundos. Extraiga
10cc de sangre para desecharla.
Si lleva NTP,
extraer de la luz contraria y clampar la vía por la que se está infundiendo. Si no es posible, realizar lavado correcto.
Si lleva ciclosporina u otro fármaco que se adhiera a las paredes del sistema,
y se pida determinación de dicho fármaco, extraer de la otra luz contraria.
Clampe el catéter.
Desconecte la jeringa del catéter.
Limpie la válvula de sellado con clorexidina 2%..
Conecte al catéter la jeringa para la extracción.
Desclampe el catéter.
Proceda a la extracción sanguínea.
Clampe el catéter.
Desconecte la jeringa del catéter y déjela sobre el paño de campo sin rozar con nada el cono de dicha jeringa.
Limpie la válvula de sellado con clorexidina 2%..
Conecte al catéter la otra jeringa cargada con 10 cc de suero fisiológico.
Desclampe el catéter.
Realice lavado infundiendo rápidamente 9 cc de suero fisiológico.
Clampe el catéter.
Desconecte la jeringa del catéter.
Limpie la válvula de sellado con clorexidina 2%..
Si la luz llevaba válvula de sellado y estaba heparinizada, vuelva a heparinizarla según protocolo.
Si las luces no estaban heparinizadas, conecte sistema de infusión a la luz del catéter, desclampe todas las luces del catéter que han sido clampadas anteriormente y ponga en marcha todas las bombas de infusión.
Coloque a la jeringa una aguja.
ORDEN TUBOS: HITACHI-COAGULACIÓN-HEMOGRAMA

No es necesario lavar la luz y desechar
para extraer muestra para hemocultivos.
Extraer hemocultivos para cada una de las luces.
Llene cada uno de los frascos de hemocultivo (anaerobios y aerobios) con 10cc de sangre aproximadamente. Invierta los frascos suavemente para homogeneizarla.
Importante especificar la luz del catéter de la que se extrae.
Se extraerán el número de hemocultivos indicado en cada caso extrayendo siempre tanto aerobios como anaerobios.
Hemocultivos:
Problemas potenciales:
Hemorragia
Neumotórax
Trombosis
Infección
Desplazamiento
Rotura
1. Mantener la permeabilidad de ambas vías del catéter, evitando la obstrucción.
2. Evitar infecciones del catéter por su manipulación inadecuada.
3. Educar al paciente en el mantenimiento del catéter en los periodos extrahospitalarios.
4. Disminuir la ansiedad del paciente.
5. Mantener la intimidad del paciente.
Solución heparina en función del grosos del catéter:

Hickman 9F: 0,5 cc HepNa al 5% en 4,5 cc SF. Administrar 3,5 cc
Hickman 13,5F: 1 cc HepNa al 5% en 4 cc SF. Administrar 4,5 cc
CURA DIARIA
salida del catéter con SF y clorexidina.
c/ 4días
HEPARINIZAR
(hospitalizados y pacientes ambulatorios)
c/ 4 días
VÁLVULA DE SELLADO
(o cuando precise)
No introducir aire en proceso de lavado y heparinización.

SELLADO:
Conocer y anotar volumen de cada luz
Desechar hasta ver salir sangre y 5cc más
Lavar cada luz con 10cc SF
Sellado heparina sódica al 5%
según volumen luz.
Presenta variaciones, dependiendo del uso a que esté destinado, con distinto número de luces, longitudes y grosor.

Consta de:
Catéter propiamente dicho
El calibre de los catéteres oscila entre el 3 Fr y el 14 Fr.Los más frecuentes son los de
9 F para la utilización cotidiana y prolongada
del catéter y el de 13,5 F de uso casi exclusivo para aféresis.
Manguito de dacrón
. Clave para la sujeción del catéter, debe situarse a 1 cm de la salida.
Manguito antimicrobiano (opcional).
Clamp y vaina de protección.
Conexiones luer
(hembra) de distintos colores para identificar cada lumen: blanco, azul y rojo. Habitualmente se utilizan los catéteres de uno o dos lúmenes. La conexión de color rojo suele ser la de mayor calibre; se usa para la extracción de sangre y para infusión de hemoderivados. Las conexiones de color blanco y azul son de menor calibre.
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